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miércoles, 25 de febrero de 2026

PRÁCTICA DE LABORATORIO: Equilibrio Iónico

 

Equilibrio Iónico

 

1. Introducción

El equilibrio iónico constituye uno de los fundamentos más importantes del comportamiento químico en solución acuosa. Cuando una sustancia se disuelve en agua, puede disociarse total o parcialmente en iones. En el caso de los electrolitos fuertes, la disociación es prácticamente completa; sin embargo, en los electrolitos débiles se establece un equilibrio dinámico entre la forma ionizada y la no ionizada.

Este equilibrio está regido por constantes como Ka, Kb y Kw, que cuantifican el grado de ionización de ácidos y bases débiles. Además, el equilibrio puede desplazarse si el sistema es perturbado, por ejemplo, mediante la adición de un ion común, cambios de concentración o variaciones de pH.

El estudio experimental del equilibrio iónico permite:

  • Comprender el comportamiento ácido–base.
  • Analizar la fuerza relativa de los electrolitos.
  • Interpretar cambios de pH mediante indicadores.
  • Aplicar el principio de Le Chatelier en sistemas reales.

En esta práctica se trabajará con soluciones de concentración conocida para observar y analizar el comportamiento del equilibrio ácido–base, el efecto del ion común y la comparación entre electrolitos fuertes y débiles.

 

2. Objetivo general

Analizar experimentalmente el comportamiento del equilibrio iónico en soluciones acuosas y relacionarlo con el pH, la fuerza del electrolito y el principio de Le Chatelier.

 

3. Objetivos específicos

  • Definir equilibrio iónico y su relación con la disociación.
  • Diferenciar electrolitos fuertes y débiles.
  • Calcular pH aproximado en soluciones simples.
  • Analizar el efecto del ion común.
  • Interpretar desplazamientos del equilibrio mediante indicadores.

 

4. Fundamento teórico

4.1 Equilibrio iónico y disociación

Cuando un electrolito se disuelve en agua puede ionizarse:

HA H + A

Este proceso es reversible en el caso de electrolitos débiles. El sistema alcanza un estado en el cual la velocidad de ionización es igual a la velocidad de recombinación iónica, estableciendo un equilibrio dinámico.

La constante de acidez se define como:

Ka = [H⁺][A⁻] / [HA]

Cuanto mayor es Ka, mayor es el grado de ionización y más fuerte es el ácido.

 

4.2 Electrolitos fuertes y débiles

  • Electrolitos fuertes: se disocian completamente (HCl, NaOH).
  • Electrolitos débiles: se disocian parcialmente (ácido acético, NH₄OH).

En un electrolito fuerte, la concentración de H⁺ depende directamente de la concentración inicial.
En uno débil, debe considerarse el equilibrio.

 

4.3 Cálculo sencillo de pH

Para un ácido fuerte:

pH = −log [H⁺]

Ejemplo:

Si [HCl] = 0.10 M

pH = −log(0.10) = 1

Para una base fuerte:

pOH = −log[OH⁻]

pH = 14 − pOH

 

4.4 Efecto del ion común

Cuando se añade un ion que ya participa en el equilibrio, este se desplaza en sentido contrario para contrarrestar la perturbación (Le Chatelier).

Ejemplo:

CH₃COOH H + CHCOO

Si aumenta [CH₃COO⁻], el equilibrio se desplaza hacia la izquierda, disminuyendo la ionización.

4.5 Indicadores ácido–base

Un indicador es un ácido débil:

HIn H + In

Cada forma presenta un color distinto. El color observado depende del pH del medio.

 

5. Materiales y reactivos

Materiales

  • Tubos de ensayo
  • Gradilla
  • Pipetas graduadas
  • Probeta de 10 mL
  • Vaso de precipitados

 

Reactivos y concentraciones de trabajo

Sustancia

Concentración

HCl

0.10 M

NaOH

0.10 M

NH₄OH

0.10 M

Ácido acético

0.10 M

NaCl

0.50 M

NaHCO₃

0.10 M

Buffer

pH 7.00

Fenolftaleína

1%

Azul de bromotimol

0.04%

Rojo fenol

0.02%

 

6. Procedimiento experimental

 

Parte A: Comparación ácido fuerte vs ácido débil

  1. Rotule dos tubos A1 y A2.
  2. Coloque en A1: 5 mL de HCl 0.10 M.
  3. Coloque en A2: 5 mL de ácido acético 0.10 M.
  4. Añada 3 gotas de azul de bromotimol.
  5. Observe color y compare intensidad.
  6. Calcule el pH teórico del HCl.

 

Parte B: Base fuerte vs base débil

  1. Rotule B1 y B2.
  2. B1: 5 mL de NaOH 0.10 M.
  3. B2: 5 mL de NH₄OH 0.10 M.
  4. Añada 3 gotas de fenolftaleína.
  5. Compare intensidad del color rosado.
  6. Calcule pH de NaOH.

 

Parte C: Efecto del ion común

  1. Coloque 5 mL de ácido acético 0.10 M.
  2. Añada 3 gotas de azul de bromotimol.
  3. Agregue 1 mL de NaCl 0.50 M.
  4. Observe cambios.

 

Parte D: Sistema bicarbonato

  1. Coloque 5 mL de NaHCO₃ 0.10 M.
  2. Añada 3 gotas de rojo fenol.
  3. Agregue 1 mL de HCl 0.10 M.
  4. Observe efervescencia y cambio de color.

Ecuación:

HCO₃⁻ + H⁺ HCO CO + HO

 

7. Registro de datos

Experimento

Sustancia

Observación

pH estimado

Interpretación

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

8. Resultados y análisis

  • Compare electrolitos fuertes y débiles.
  • Justifique diferencias de color.
  • Explique efecto del ion común.
  • Relacione con Le Chatelier.
  • Escriba ecuaciones de ionización.

 

9. Conclusiones

  • Evidencia de equilibrio dinámico.
  • Diferencias entre disociación completa y parcial.
  • Aplicación del ion común.
  • Importancia en sistemas biológicos e industriales.

 

10. Cuestionario

  1. Defina equilibrio iónico.
  2. Diferencie electrolito fuerte y débil.
  3. Calcule el pH de 0.10 M HCl.
  4. ¿Por qué NH₄OH es base débil?
  5. Explique el efecto del ion común.
  6. ¿Qué indica el cambio de color del indicador?

 

11. Normas de seguridad

  • Bata, guantes y gafas obligatorios.
  • Manipular HCl y NaOH con precaución.
  • Neutralizar residuos antes de desechar.

 

12. Referencias (APA 7.ª edición)

Brown et al. (2018). Química: La ciencia central (13.ª ed.). Pearson.

Chang & Goldsby (2016). Química (12.ª ed.). McGraw-Hill.

Zumdahl & Zumdahl (2014). Chemistry (9th ed.). Cengage Learning.

lunes, 23 de febrero de 2026

PRÁCTICA DE LABORATORIO: Aislamiento de aceite de almendra dulce

 

Aislamiento de aceite de almendra dulce

 

1. Objetivos

Objetivo general

Aislar el aceite de almendra dulce a partir de semillas naturales mediante un proceso de extracción, aplicando técnicas básicas de separación y purificación empleadas en Química Orgánica y Bioquímica.

Objetivos específicos

  • Reconocer el aceite vegetal como una mezcla de lípidos, principalmente triglicéridos.
  • Aplicar el principio de extracción sólido-líquido para la obtención de compuestos orgánicos naturales.
  • Diferenciar métodos de extracción: prensado, maceración y extracción con disolventes.
  • Evaluar el rendimiento de un proceso de aislamiento de productos naturales.
  • Relacionar la estructura química de los lípidos con sus propiedades físicas y aplicaciones.

 

2. Introducción

Los aceites vegetales constituyen una de las fuentes naturales más importantes de lípidos, y se obtienen principalmente de semillas, frutos y nueces. El aceite de almendra dulce es especialmente valorado por su uso en cosmética, farmacéutica y alimentación, debido a sus propiedades emolientes, su estabilidad y su alto contenido de ácidos grasos insaturados, como el ácido oleico y el ácido linoleico.

Desde el punto de vista químico, el aceite de almendra dulce está compuesto mayoritariamente por triglicéridos, que son ésteres formados por la esterificación del glicerol con tres moléculas de ácidos grasos. Estas moléculas presentan carácter apolar, lo que explica su insolubilidad en agua y su alta solubilidad en disolventes orgánicos no polares.

Esta práctica permite al estudiante comprender cómo, a partir de un material vegetal, es posible aislar un producto orgánico natural empleando principios simples de solubilidad y afinidad química. Además, ilustra la importancia de los métodos de extracción en la industria química, farmacéutica y alimentaria.

Pedagógicamente, el aislamiento de aceite vegetal es una experiencia altamente formativa, ya que integra conceptos de química orgánica, química de los lípidos, métodos de separación y cálculo de rendimiento, al mismo tiempo que fortalece habilidades experimentales básicas.

3. Fundamentos teóricos

El aceite de almendra dulce está constituido principalmente por triglicéridos, cuya estructura general y proceso de síntesis es:

Diagrama

El contenido generado por IA puede ser incorrecto.


Químicamente, se trata de moléculas altamente apolares, lo que justifica su:

  • Insolubilidad en agua.
  • Solubilidad en disolventes orgánicos como hexano, éter etílico o diclorometano.

La extracción sólido-líquido es un método de separación que consiste en transferir uno o varios componentes de una fase sólida a una fase líquida mediante un disolvente apropiado. El disolvente “arranca” selectivamente el compuesto de interés, en este caso el aceite, dejando atrás los sólidos insolubles de la almendra.

El proceso general incluye:

  1. Trituración de la muestra vegetal, para aumentar el área de contacto.
  2. Contacto con el disolvente orgánico, que disuelve el aceite.
  3. Separación del sólido por filtración.
  4. Eliminación del disolvente para obtener el aceite aislado.

En términos industriales, este mismo principio se utiliza a gran escala para la obtención de aceites comestibles (soya, girasol, maíz), empleando principalmente hexano como disolvente extractor.

4. Materiales y equipos

  • Mortero y pistilo
  • Vaso de precipitados (100 y 250 mL)
  • Agitador magnético o varilla de vidrio
  • Embudo y papel filtro
  • Probeta graduada
  • Balanza analítica
  • Placa calefactora o baño María
  • Campana de extracción
  • Frasco seco y rotulado para el aceite

 

5. Reactivos

  • Almendras dulces trituradas (20–30 g)
  • Disolvente orgánico: hexano, éter etílico o diclorometano
  • Agua destilada (para limpieza de material)

Nota: el hexano es el disolvente más representativo del método industrial; el éter etílico puede emplearse si no se dispone de hexano, tomando mayores precauciones por su inflamabilidad.

6. Seguridad y manejo de residuos

  • Los disolventes orgánicos son volátiles e inflamables: trabajar siempre en campana.
  • No inhalar vapores ni permitir contacto con la piel.
  • No usar llamas abiertas.
  • El residuo sólido de almendra debe eliminarse según normativa institucional.
  • El disolvente usado debe recolectarse en el contenedor de residuos orgánicos.

7. Procedimiento experimental

A) Preparación de la muestra

  1. Pesar aproximadamente 25 g de almendras dulces.
  2. Triturarlas finamente en un mortero hasta obtener una pasta homogénea.

B) Extracción del aceite

  1. Transferir la pasta a un vaso de precipitados.
  2. Añadir 50–70 mL de disolvente orgánico.
  3. Agitar durante 10–15 minutos para favorecer la disolución del aceite.
  4. Dejar reposar unos minutos.

C) Filtración

  1. Filtrar la mezcla para separar el sólido de la solución orgánica que contiene el aceite.
  2. Recoger el filtrado en un vaso limpio.

D) Recuperación del aceite

  1. Evaporar el disolvente en campana mediante calentamiento suave en baño María.
  2. Cuando el disolvente se haya eliminado por completo, quedará el aceite de almendra dulce como un líquido amarillento y viscoso.
  3. Transferir el aceite a un frasco seco y rotulado.

8. Observaciones y registro de datos

Etapa

Observaciones

Cambios físicos

Incidencias

Trituración

Extracción

Filtración

Evaporación

Producto final

Color, viscosidad, olor

 

9. Cálculos

  • Masa de almendra inicial (g).
  • Masa de aceite obtenido (g).
  • Rendimiento de extracción:


Comparar con el contenido teórico de aceite reportado para almendras (≈ 45–55 %).

 

10. Resultados esperados

  • Obtención de un líquido aceitoso, amarillento, de olor suave característico.
  • Rendimiento típico de laboratorio docente: 20–40 %, dependiendo de la eficiencia de la extracción y la pureza de la muestra.

11. Cuestionario

  1. ¿Por qué el aceite de almendra es insoluble en agua pero soluble en disolventes orgánicos?
  2. ¿Qué tipo de moléculas predominan en los aceites vegetales?
  3. ¿Qué ventajas tiene el uso de disolventes orgánicos en la extracción de lípidos?
  4. Mencione dos aplicaciones industriales o farmacéuticas del aceite de almendra dulce.
  5. ¿Qué factores influyen en el rendimiento de la extracción?

12. Bibliografía (APA 7.ª edición)

Nelson, D. L., & Cox, M. M. (2017). Lehninger principles of biochemistry (7th ed.). W. H. Freeman.

Pavia, D. L., Lampman, G. M., Kriz, G. S., & Engel, R. G. (2015). Introduction to organic laboratory techniques: A microscale approach (5th ed.). Cengage Learning.

Harborne, J. B. (1998). Phytochemical methods: A guide to modern techniques of plant analysis (3rd ed.). Springer.

 

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